TECNICA DE FAUST

CENTRO DE BACHILLERATO TECNOLOGICO INDUSTRIAL Y DE SRVICION NO.199

ALUMNA: GRISELDA DOMINGUEZ HERNADEZ
3 SEM GRUPO: DM
PROFESOR: DR.VICENTE MARTINEZ FRAGOSO

“C.P.S. TÉCNICA DE FAUST”

FUNDAMENTO:

En este método se utiliza solución de Zn, cuya densidad especifica es de 1.180 (33%), que conforma un medio de densidad más alta que la de los huevos: Necator 1.055, Tricocéfalo 1.150, Áscaris fértil 1.110 y facilita que los huevos livianos de estos helmintos, con menor peso específico que la solución, se concentren y floten.

La concentración adecuada aconsejada es la que usa como reactivo una solución acuosa de sulfato Zn al 33% con una densidad al 1.180. El agua utilizada diluye y lava la materia fecal. El filtrado con gasa doblada y evita que los detritos gruesos traspasen las paredes, la centrifugación enriquece en delgada película la superficie del líquido centrifugado con los huevos livianos de algunos helmintos.

MATERIAL:

-Portaobjetos -Sol. Acuosa de sulfato de Zn

-Cubreobjetos -Heces fecales

-Gasas -Embudo pequeño

-Tubos de ensayo -Vaso de precipitados

TÉCNICA:

1.-Mezclar bien una porción de materia fecal para preparar una superficie en 10 partes de agua destilada.

2.-Filtrar la suspensión a través de una gasa doblada en 4, sobre un tubo de centrifuga, ayudándose con un embudo pequeño.

3.-Centrifugar el filtrado a 2500 rpm por un min.

4.-Decantar el líquido sobrenadante y completar con agua hasta igualar la medida anterior, centrifugar nuevamente. Resuspender el sedimento.

5.-Repetir el procedimiento 2 veces hasta que el líquido sobrenadante este listo.

6.-Decantar nuevamente el líquido sobrenadante reemplazándolo por igual cantidad de solución de sulfato de Zn al 33%. Mesclar bien la solución con el sedimento. Centrifugar durante 1 min a 1500 rpm.

7.-Tomar 3-4 gotas de las partículas que flotan en la superficie del líquido. Colocarlos en un portaobjetos y mezclarla con 1-2 gotas de lugol; colocar el cubreobjetos.

8.-Examinar al microscopio y reportar sus resultados.

OBSERVACIONES:

Al ver la muestra en el microscopio pudimos observar que sólo había residuos órganicos como fibras y tejido conectivo pero ningun parásito comop se esperaba.

COMENTARIO:

A mi punto de vista en las heces fecales no logre identificar parásitos sólo algunos residuos de comida asi como algunas fibras, tejido, y unos cuantos restos de cristales grasos. Pero todavia no puedo identificar muy bien lo s parásitos sólo se que algunos son comensales del intestino.

CONCLUSION:

Método indicado para el diagnóstico de huevos livianos de helmintos (Necator, tricocefalos, ascaris, H.nana).

Técnicas Macroscópicas Coproparasitoscopicas

Centro de Bachillerato Tecnológico Industrial y de servicios No.199

PRACTICA:

Técnicas Macroscópicas Coproparasitoscopicas

Tamizado

PARASITOLOGIA

Profesor: Vicente Martínez Fragoso.

Alumna: Griselda Domínguez Hernández

Especialidad: Laboratorista Clínico

18/11/2011

Se fundamenta en el fenómeno de la filtración, utilizando tamices de diferentes diámetros en donde quedaran atrapados los parásitos (cestodos, trematodos, nematodos). Esta técnica permite observar directamente las características morfológicas de los parasitos adultos enteros o fraccionados de los metazoarios.

MATERIAL T EQUIPO

1 Coladera de tamiz fino

1abatelenguas

1caja Petri

1pinzas

1.-colocar pequeñas porciones de materia fecal en la coladera con ayuda del abatelenguas.

2.-dispersar la materia fecal con el abatelenguas y agregarle agua hasta lograr un tamizado lo más limpio posible.

3.-revisar cuidadosamente las partículas de las heces  que hayan quedado en la coladera.

4.-los parasitos encontrados colocarlos en una caja Petri con solución salina.

5.-se identificara la parte del parasito o el parasito completo.

6.-se reportara el género y la especie del parasito o parte del parasito.

Lo que logramos identificar fue un proglotido y deacuerdo con los datos que reportar es un helminto, cestodo y es el proglotido de una tenia.

CONCLUCIONES: creo que esta práctica es buena pero no tanto como otra que hemos realizado anteriormente  ya por medio de esta práctica a pesar de que en esta ocasión si logramos identificar parasitos no se puede ver el parasito completo.

practica no.1

COPROPARASITOSCOPIO

DIRECTO                                                                                                                            

DESARROLLAR TECNICAS PARASITOLOGICAS

DR. VIECENTE MARTINEZ

ALUMNA: Griselda Domínguez Hernández

 PRACTICA: CROPOPARASITOSCOPIO DIRECTO

FUNDAMENTO:Investigar mas a fondo las características de algunos parásitos que habitan en nuestro cuerpo.

OBJETIVO: Encontrar por medio de las heces algunos parásitos o fibras.

 PROCEDIMIENTO:



El primer paso que hicimos fue poner la muestra en un portaobjetos utilizando.

Después con la pipeta Pasteur sacamos sol. fisiológica para ponerlo en la muestra donde se encontraba en el portaobjetos.

Lo Siguiente fue que  le colocamos el cubreobjetos.

A continuación lo colocamos en el microscopio a 10x  para ubicar un campo ya después a 40x para verlo mejor.

Lo que observamos en el microscopio una fibra.

TECNICA DE STOLL (CPS)

(Técnica de Cuenta de huevos en las heces)

Fundamento:

Cundo se identifica un parasito es necesario que se determine la intensidad en la cual se encuentra este, la mayoría de esta parasitosis es asintomática, pero se correlaciona con la expulsión de huevecillos de helmintos al día; se puede hacer una relación de la cantidad de parásitos que habitan con la cantidad de huevecillos en cierta cantidad conocida de heces. En los resultados también influye la forma de vida así como la mala alimentación y digestión, dieta, la producción de huevos y la consistencia de las heces.

Para unos mejores resultados en las muestras es necesario realizarlo en una serie de varios días y hacer las cuentas, así es como se determina aproximadamente la expulsión de los huevecillos.

Objetivo:

Los alumnos aprenderán a identificar algunos huevecillos de helmintos que viven o parasitan en su intestino mediante una técnica cuantitativa.

Material y reactivos:

*Probeta de 15ml                                  *Hidróxido de sodio                                                                      *abatelenguas                                                                                                                                                      *Aplicador                                                                                                                                                   *Cuentas de vidrio                                                                                                                                      *Portaobjetos                                                                                                                                   *Cubreobjetos

Procedimiento:

1.- Se llena la probeta a 5.6 ml con el hidróxido de sodio

             

2.- Con el aplicador se agrega una pequeña cantidad de heces hasta que se eleve el hidróxido a 6ml

3.- Después se añaden las diez cuentas de vidrio, en este caso fueron cinco, se tapa y se agita hasta que las heces estén desmoronadas y bien mezcladas con el NaOH

4.- Cuando ya estén disueltas por completo, se vuelve a agitar el tubo durante un minuto y se toma de la muestra cierta cantidad esta se coloca en el portaobjetos y después se coloca el cubreobjetos.

                    

                                              

5.- Se pone la muestra al microscopio en el objetivo de 40x y se observa si hay huevecillos, debe ser así se hace la parte cuantitativa.

6.- Cuando se efectúa la cuenta se realizan dos partes separadas de acolitas de la suspensión.

Observaciones:

En la muestra realizada no se logró ver algún huevecillo ya que solo logramos observar restos de fibra no digerida o parcialmente digerida.

Comentario: Aunque no logramos ver huevecillos en la muestra, hubiese sido muy bueno realizar cálculos para saber cuántos huevecillos y de que especies tenemos en el intestino.

Datos:

Hembra de la especie Necátor: 7000 huevos al día

“                               “Áscaris: 200000 huevos al día

“                               “Trichuris: 7500 huevos al día

Calculo:

1.- Se cuentan los huevos en determinado volumen, el número total de estos en 1ml se encuentran al multiplicar la cuenta total por 100.

2.-Suponiendo que el promedio de una  persona rebasa los 100 gr de heces por día, es posible calcular el número de huevos al día multiplicando el resultado por 100

3.- Para determinar el número de parásitos hembras presentes, se divide el número diario de huevecillos que hay en las heces entre el promedio de las hembras que ya se dieron.

Conclusión:

Se aprendió a realizar otra técnica que nos permitió hacer un método cuantitativo para determinar el número de huevecillos que viven dentro de nosotros.

TECNICA DE WILLIS

Centro de Bachillerato Tecnológico Industrial y de Servicios No.199

PARASITOLOGIA

METODO DE CONCENTRACION POR FLOTACION DE WILLIS

(TECNICA DE WILLIS)

Profesor: Vicente Martínez Fragoso

Alumna: Griselda Domínguez Hernández

3 semestre          DM

24/09/2011

INTRODUCCION

Este método esta recomendado especialmente para la investigación de protozoarios y helmintos. Consiste en preparar la materia fecal con solución  saturada de cloruro de sodio.

Los huevos y quistes de peso específico menor que la solución saturada de cloruro de sodio tienden a subir y adherirse a un cubreobjetos colocando en contacto con la superficie del líquido.

MATERIAL Y REACTIVOS

1Vaso de precipitado                                                Solución saturada de NaCl

1Embudo                                                                   Solución de Yodo-Lugol

1Gasa

1Tubo de ensaye

1Portaobjetos

1Cubreobjetos

PROCEDIMIENTO

1.-Tomar aproximadamente 1 gr. De heces fecales con un abatelenguas.

2.-Colocar la muestra en un vaso de precipitado y mezclar con 10 m. de solución saturada de cloruro de sodio.

3.-En un tubo de ensaye filtre la mezcla  con una gasa, llenando completamente el tubo.

4.-Coloque un cubreobjetos sobre el tubo, de manera que el liquido haga contacto con el cubreobjetos.

5.-Espere de 5 a 10 minutos.

6.-Los quistes o huevos flotan y quedaran adheridos a la car del cubreobjetos que esta en contacto con la mezcla.

7.-Colocar una gota de yodo-Lugol sobre un portaobjetos , retira el cubreobjetos con cuidado para evitar la perdida  del material y ponerlo sobre el portaobjetos.

8.-Examina la muestra al microscopio con el objetivo de 40x, buscando quistes o huevecillos de parásitos.

OBSERVACIONES

Gracia a este método (Willis) logramos evidenciar QUISTES DE ENTAMOEBA HISTOLYTICA Y ENTAMOEBA COLI. Y creo que este método es muy bueno ya que fue muy fácil encontrarlas en el campo del microscopio.

                        ENTAMOEBA COLI

     ENTAMOEBA HISTOLYTICA

CONCLUCIONES

El alumno puede realizar un CPS cualitativo de flotación (método de Willis) para observar formas parasitarias y podemos decir que este método es muy recomendado para realizar la investigación de protozoarios y helmintos.